Приказ МЗ РБ №165 от г

«О проведении дезинфекции и стерилизации учреждениями здравоохранения»

1.Дезинфекция ИМН: определение, методы.

Дезинфекция– уничтожение патогенных и условно-патогенных микроорганизмов, вирусов ( в т.ч.возбудителей парентеральных вирусных гепатитов, ВИЧ-инфекция), вегетативных бактерий (включая микобактерии туберкулёза), грибов. Дезинфекции подлежат все изделия после применения их у пациентов. После дезинфекции изделия промывают водопроводной водой, высушивают и применяют по назначению или подвергают предстерилизационной очистке (ПСО) и стерилизации.

Физический метод дезинфекции:

— способом кипячения в дистиллированной воде (30 мин) или в воде с добавлением натрия двууглекислого (сода пищевая) (15 мин.) — изделия из стекла, металлов, термостойких полимерных материалов и резин. Требуется предварительная очистка. Отсчёт времени дезинфекционной выдержки начинают с момента закипания воды.

— паровым методом в паровом стерилизатороре (автоклаве) (110 о С, МПа 0,5 кгс/см2), 20 мин — изделия из стекла, металлов, резин, латекса, термостойких полимерных материалов. Предварительная очистка изделий не требуется. Дезинфекция осуществляется воздействием водяного насыщенного пара под избыточным давлением.

— воздушным методом – осуществляют изделия из стекла, металлов, силиконовой резины и проводят в открытом виде на полках воздушного стерилизатора. Этим методом можно дезинфицировать только изделия, не загрязненные органическим и веществами (ввиду их пригорания к поверхности изделий).

Химический метод дезинфекции является более распространенным и общепринятым методом обеззараживания изделий медназначения в ЛПУ. Дезинфекцию с использованием химических средств проводят способом погружения изделий в раствор сразу после применения, не допуская их подсушивания. Разъёмные изделия дезинфицируют в разобранном виде. Каналы и полости изделий заполняют дезинфицирующим раствором. При видимом загрязнении изделий медназначения биологическим субстратами и во избежание снижения эффективности действия рабочих растворов дезсредства рекомендуется проведение предварительного промывания водопроводной водой или раствором дезсредства в специально выделенной ёмкости. Промывные воды дезинфицируются в последующим одним из методов по режиму для вирусных гепатитов. Рекомендуется использовать специальные ёмкости (полимерные контейнеры с крышками, в которых изделия размещают на специальных перфорированных решетках) для удобства дальнейшей обработки.

По окончании дезинфекционной выдержки изделия промывают проточной водой.

2. Химическая очистка мединструментария.

Химическая очистка хирургических инструментов из нержавеющей стали

х Для скальпелей из нержавеющей стали.

хх Для инструментов с наличием оксидной пленки.

ххх Для инструментов с сильными коррозионными поражениями, места поражений рекомендуется дополнительно очищать ершом или ватно-марлевым тампоном.

3. Особенности дезинфекции мединструментария, имеющего каналы, полости, оптику.

Каналы и полости изделий заполняют дезинфицирующим раствором.

При выборе средств очистки, дезинфекции медицинских изделий с оптикой следует учитывать рекомендации изготовителей, касающиеся воздействия конкретных средств на материалы этих изделий.

4. Режимы дезинфекции при применении различных дезсредств.

Для дезинфекции используются средства разрешенные Министерством Здравоохранения Республики Беларусь по прилагаемой инструкции.

5. Предстерилизационная обработка мединструментария: методика приготовления и постановки пробы, контроль качества ПСО.

Предстерилизационная очистка проходит поэтапно.

1 этап – замачивание в моющем растворе при полном погружении (температура не менее 20 о С, время – согласно инструкции раствора).

2 этап – мойка в том же растворе, в котором проводили замачивание, при помощи ерша, ватно-марлевого тампона не менее 30 сек.

3 этап – ополаскивание питьевой проточной водой не менее 1 мин.

4 этап – ополаскивание дистиллированной водой – время не нормируется.

5 этап – сушка горячим воздухом (t 85 градусов) до полного исчезновения влаги.

Контроль качества ПСО – азопирамовая проба.

Перед проверкой качества ПСО обработки материалов раствор Азопирам смешивают с равным количеством 3% перекиси водорода (1:1). Этим раствором обрабатывают исследуемые материалы: протирают тампонами, заполняют шприцы, иглы.

В присутствии следов крови немедленно или не позже, чем через 1 мин. появляется окрашивание, вначале фиолетово-синее, быстро переходящее в сиренево-пурпурное или буроватое.

Окрашивание, наступившее позже, чем через 1 мин. не учитывается. Рабочий раствор годен в течение 1-2 часов.

Методика приготовления реактивов для постановки пробы

Приготовление исходного раствора. Для приготовления 1 л (куб.дм) исходного раствора азопирама отвешивают 100 г амидопирина и 1,0 — 1,5 г солянокислого анилина, смешивают их в сухой мерной посуде и доводят до объема 1 л (куб.дм) 95-процентным этиловым спиртом. Смесь тщательно перемешивают до полного растворения ингредиентов.

Исходный раствор азопирама следует хранить в плотно закрытом флаконе в темноте. Допустимый срок хранения исходного раствора азопирама составляет: при температуре 4 град. C (в холодильнике) — 2 месяца; при комнатной температуре (20 +/- 2 град. C) — не более 1 месяца. Умеренное пожелтение исходного раствора без выпадения осадка в процессе хранения не снижает рабочих свойств раствора.

Реактив азопирам можно хранить не более 2 часов. При более длительном стоянии может появиться спонтанное розовое окрашивание реактива. При температуре выше +25 град. C раствор розовеет быстрее, поэтому его необходимо использовать в течение 30 — 40 мин. Не следует подвергать проверке горячие инструменты, а также хранить реактив азопирам на ярком свету и вблизи нагревательных приборов.

В случае необходимости пригодность реактива азопирам проверяют следующим образом: 2 — 3 капли реактива наносят на пятно крови. Если не позже чем через 1 мин появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневый цвет, реактив пригоден к употреблению, если окрашивание в течение 1 мин не появляется, реактивом пользоваться не следует.

Методика постановки пробы

Контролируемое изделие протирают марлевой салфеткой, смоченной реактивом, или наносят 2 — 3 капли реактива на изделие с помощью пипетки.

В шприцы вносят 3 — 4 капли рабочего раствора реактива и несколько раз продвигают поршнем для того, чтобы смочить реактивом внутреннюю поверхность шприца, особенно места соединения стекла с металлом, где чаще всего остается кровь, реактив оставляют в шприце на 1 мин, а затем вытесняют на марлевую салфетку. При проверке качества очистки игл реактив набирают в чистый, не имеющий следов коррозии шприц. Последовательно меняя иглы, через них пропускают реактив, вытесняя 3 — 4 капли на марлевую салфетку.

Качество очистки катетеров и других полых изделий оценивают путем введения реактива внутрь изделия с помощью чистого шприца или пипетки. Реактив оставляют внутри изделия на 1 мин, после чего сливают на марлевую салфетку. Количество реактива, вносимого внутрь изделия, зависит от его величины.

Учет результатов постановки пробы

При положительной азопирамовой пробе в присутствии следов крови немедленно или не позднее чем через 1 мин появляется вначале фиолетовое, затем быстро, в течение нескольких секунд, переходящее в розово-сиреневое или буроватое окрашивание реактива.

Азопирам, кроме гемоглобина, выявляет наличие на изделиях остаточных количеств:

— пероксидаз растительного происхождения (растительных остатков);

— окислителей (хлорамина, хлорной извести, стирального порошка с отбеливателем, хромовой смеси для обработки посуды и др.);

— ржавчины (окислов и солей железа);

При наличии на исследуемых изделиях ржавчины и указанных окислителей наблюдается бурое окрашивание реактива, в остальных случаях происходит окрашивание в розово-сиреневый цвет.

При постановке азопирамовой пробы окрашивание реактива, наступившее позже чем через 1 мин после постановки пробы, не учитывается.

Результаты контроля отражают в журнале по форме N 366/у (табл. 9).

Контроль качества предстерилизационной очистки проводят специалисты территориальных санитарно-эпидемиологических учреждений в зависимости от эпидзначимости медучреждения и конкретной эпидситуации.

Самоконтроль в ЛПУ проводят: в централизованных стерилизационных (ЦС) ежедневно, в отделениях — не реже 1 раза в неделю; организует и контролирует его старшая медицинская сестра (акушерка) отделения, главная медсестра — 1 раз в месяц.

Контролю подлежит: в ЦС — 1% от каждого наименования изделий, обработанных за смену, в отделениях — 1% одновременно обработанных изделий каждого наименования, но не менее 3 единиц.

Качество предстерилизационной очистки изделий оценивают путем постановки азопирамовой пробы (на наличие остаточных количеств крови).

6. Стерилизация. Методы, режимы стерилизации. Выбор режима стерилизации для различных видов мединструментария.

Стерилизация – умерщвление всех патогенных и непатогенных микроорганизмов, в том числе и их споровых форм.

Стерилизацию осуществляют физическими (паровой, воздушный, в среде нагретых шариков) и химическими (применение растворов химических средств, газовый) методами. Выбор адекватного метода стерилизации зависит от особенностей стерилизуемых изделий.

Стерилизация паровым методом (водяной насыщенный пар под избыточным давлением)

130-134°С. 2,0 20 мин. Изделия из коррозионно-стойких металлов, стекла изделия из текстильных материалов резин, лигатурный шовный материал

120—122°С. 1,1 45 мин. Изделия из резин, отдельных видов пластмасс (полиэтилен высокой плотности, ПВХ-пластикаты), лигатурный шовный материал

Стерилизация воздушным методом (сухой горячий воздух)

При воздушном методе стерилизации стерилизующим средством является сухой горячий воздух температурой 160°С – 150 мин и 180°С – 60 мин; стерилизацию осуществляют в воз­душных стерилизаторах стерилизуют изделия из металла, стекла и резины на основе силиконового каучука.

Стерилизация растворами химических средств.

Стерилизация изделий растворами химических средств является вспомога­тельным методом, поскольку не позволяет простерилизовать их в упаковке, а по окон­чании стерилизации необходимо промыть изделия стерильной жидкостью (питьевая вода, 0,9% раствор натрия хлорида), что при нарушении правил асептики может при­вести к вторичному обсеменению (контаминации) простерилизованных изделий мик­роорганизмами.

Данный метод следует применять для стерилизации изделий, в конструкцию ко­торых входят термолабильные материалы, то есть когда особенности материалов изде­лий не позволяют использовать другие рекомендуемые методы стерилизации (физиче­ские). Конструкция изделия должна позволять стерилизовать его растворами химиче­ских средств. При этом необходим хороший доступ стерилизующего средства и про­мывной жидкости ко всем стерилизуемым поверхностям изделия.

Для стерилизации изделий растворами химических средств используют средства, разрешенные к применению для данной цели по режимам согласно инструк­тивно-методическим документам, утвержденным в установленном порядке Минздра­вом Республики Беларусь,

При стерилизации растворами химических средств используют стериль­ные емкости из стекла, металлов, термостойких пластмасс, выдерживающих стерили­зацию паровым методом, или покрытые эмалью (эмаль без повреждений).

Стерилизация газовым методом

Для газового метода стерилизации используют смесь ОБ (смесь окиси этилена и бромистого метила в весовом соотношении 1:2,5 соответственно), окись этилена, пары раствора формальдегида в этиловом спирте.

Азопирамовая проба

Справочник медсестры

Ежедневно проводится в ЦСО, самоконтроль на отделении - 1 раз в неделю.

Приготовить:
- 1% изделий каждого наименования, не менее 3-5 штук;
- исходный раствор азопирама, приготовленный аптекой;
- 3% перекись водорода;
- марлевые салфетки;
- стёкла с мазками крови;
- журнал контроля качества проведения предстерилизационной обработки

Действия:
1. Приготовить рабочий раствор азопирама:
смешать равные объёмы (в пропорции 1:1) исходного раствора азопирама и 3% перекиси водорода (полученный раствор годен в течение 1-2 часов).
2. Проверить активность рабочего раствора, капнув несколько капель на стекло с мазком крови.
3. Холодные изделия (не выше 25*С) протереть салфеткой с раствором или нанести 3-4 капли рабочего раствора пипеткой, особенно в местах соединения.
4. Экспозиция 0,5- 1 минута.
5. Чтение пробы:
- розово-сиреневое окрашивание говорит об остатках крови;
- бурое окрашивание говорит о наличии окислителей, моющего средства, ржавчины.
6. Независимо от результатов пробы изделия промыть водой или спиртом.
7. При положительной пробе вся партия изделий подлежит повторной обработке.
8. Запись результатов в журнал.

Методические указания по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации изделий медицинского назначения

Номер документа: МУ-287-113
Утвержден: Монисов А.А,
Дата утверждения: 30.12.1998

Утверждаю
Руководитель Департамент госсанэпиднадзора Минздрава России
А.А.МОНИСОВ
30 декабря 1998 г. N МУ-287-113

Методические указания разработаны:

Научно-исследовательским институтом дезинфектологии МЗ РФ;

Пермским областным центром ГКСЭН;

Пермским городским центром ГКСЭН;

Пермской городской дезинфекционной станцией;

Архангельским государственным медицинским институтом.

Авторы: И.М. Абрамова, Л.Г. Пантелеева, Л.С. Федорова, Н.В. Рамкова, Г.Н. Мельникова, Р.Л. Гутерман, Т.Н. Юшманова, Т.М. Лебедева, С.С. Николаева, В.В. Семериков, В.Н. Северюхин, И.С. Шарипова, Е.А. Каликова.

Методические указания предназначены для специалистов лечебно-профилактических учреждений (ЛПУ), работников дезинфекционных станций и центров Государственного санитарно-эпидемиологического надзора.

Ответственный за выпуск - канд. мед. наук В.В. Семериков.

1. ОБЩИЕ ПОЛОЖЕНИЯ

1.1. Дезинфекция, предстерилизационная очистка и стерилизация изделий медицинского назначения (далее - изделия) направлены на профилактику внутрибольничных инфекций у пациентов и персонала лечебно-профилактических учреждений (ЛПУ).

1.2. Дезинфекцию изделий проводят с целью уничтожения патогенных и условно-патогенных микроорганизмов - вирусов (в том числе возбудителей парентеральных вирусных гепатитов, ВИЧ-инфекции), бактерий (включая микобактерии туберкулеза), грибов (включая грибы рода Кандида) - на изделиях медицинского назначения, а также в их каналах и полостях.

Дезинфекции подлежат все изделия после применения их у пациента. После дезинфекции изделия применяют по назначению или (при наличии показаний) подвергают предстерилизационной очистке и стерилизации.

1.3. Стерилизацию изделий проводят с целью умерщвления на изделиях или в изделиях микроорганизмов всех видов, в том числе споровых форм микроорганизмов. Стерилизации подлежат все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью в организме пациента или вводимой в него, инъекционными препаратами, а также изделия, которые в процессе эксплуатации контактируют со слизистой оболочкой и могут вызвать ее повреждение.

1.4. Изделия многократного применения, подлежащие стерилизации, перед стерилизацией подвергают предстерилизационной очистке.

Предстерилизационную очистку проводят с целью удаления с изделий белковых, жировых и механических загрязнений, а также остатков лекарственных препаратов.

1.5. В качестве средств дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации используют только разрешенные в установленном порядке в Российской Федерации физические и химические средства.

1.6. При выборе средств следует учитывать рекомендации изготовителей изделий, касающиеся воздействия конкретных средств (из числа разрешенных в нашей стране для данной цели) на материалы этих изделий.

При проведении дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации допускается использование только того оборудования (установки, моечные машины, стерилизаторы и др.), которое разрешено в установленном порядке к промышленному выпуску и применению (в случае импортного оборудования - разрешенного к применению) в Российской Федерации.

1.7. Емкости с растворами дезинфицирующих, моющих и стерилизующих средств должны быть снабжены крышками, иметь четкие надписи с указанием названия средства, его концентрации, назначения, даты приготовления (для готовых к применению средств, разрешенных для многократного использования, указывают дату начала использования средства).

1.8. Рекомендации по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации сложных по конструкции изделий (эндоскопы, медицинские инструменты к гибким эндоскопам и др.), а также дополнительные сведения, касающиеся различных аспектов указанных видов обработки изделий, более подробно изложены в ряде официальных инструктивно-методических документов, указанных в Приложении 1.

1.9. Перечень дезинфекционных средств и методических документов по их применению приведен в Приложении 2.

Азопирамовая проба (Азопирам-Комплект): инструкция по применению

Азопирам - это химический состав, включающий в себя 10% раствор амидопирина (раствор делается на основе этилового спирта) и солянокислый анилин, концентрация которого составляет 0,10-0,15%. Для того, чтобы приготовить данный реактив, берут 100 граммов амидопирина и 1-1,5 грамма солянокислого анилина. Полученную смесь разбавляют 96% этиловым спиртом, пока не получится один литр раствора. Препарат продаётся, как Азопирам-Комплект, инструкция к которому прилагается к товару. В комплект входят три реактива.

Любые медицинские инструменты, контактирующие с кровью человека, должны проходить предварительную обработку. К таким инструментам относятся все хирургические приспособления, катетеры, шприцы для инъекций и прочие. Обработка их проводится в два этапа: предстерилизационная обработка и собственно стерилизация. Перед тем, как отправлять инструментарий на стерилизацию, он обязательно должен пройти предстерилизационную обработку, включающую в себя замачивание в дезинфицирующих и моющих растворах. Ведь во время проведения любых манипуляций на медицинских инструментах остается кровь, микроскопические кусочки кожи и т.д.

Даже если учесть, что теоретически во время стерилизации любые микроорганизмы погибнут, всё равно наличие присохшей к инструментарию крови и клеток эпителия могут плохо отразиться как на человеке, подвергаемом процедурам при помощи данных приспособлений, так и на них самих. Именно поэтому и проводится обработка специальными растворами. Однако затем эти растворы требуется тщательно вымывать, а уже потом стерилизовать инструменты.

Для проверки качества предстерилизационной обработки и был разработан азопирам . Медицинский работник не может увидеть оставшиеся на шприце или каком-то другом приспособлении следы крови после его промывания в растворах. Однако небольшие частички крови иногда остаются после не слишком тщательной обработки. Чтобы обнаружить эти частички, делается азопирамовая проба. с помощью которой и определяется, насколько хорошо или плохо, был обработан инструментарий.

Кровь — это не единственное вещество, на которое реагирует данный реактив. Благодаря ему можно обнаружить и остатки моющего средства на плохо промытых после обработки инструментах, кислоты или ржавчины.

Азопирам применяют не в чистом виде, а разбавив его 3%-ной перекисью водорода в соотношении 1:1. Однако следует знать, что готовый, разведенный перекисью раствор, можно использовать не позже, чем на протяжении первых двух часов после его приготовления. В это время он ни в коем случае не должен находиться на ярком свету. Также нельзя проводить проверку возле каких-либо нагревательных приборов или проверять горячие инструменты.

Как делается азопирамовая проба . Для этого просто берется подготовленная смесь реактива и перекиси водорода и наносится на проверяемый инструментарий. Наносить можно при помощи пипетки или смоченным в растворе ватным тампоном. Всё зависит от того, что именно следует проверять. Например, чтобы обработать шприцы, недостаточно будет просто смазать их тампоном с реактивом. Нужно ещё налить немного раствора внутрь каждого шприца и равномерно распределить его по стенкам при помощи движений поршня.

Для того, чтобы определить качество предстерилизационной обработки медицинских инструментов, придётся подождать не больше одной минуты. За это время азопирам или отреагирует на наличие крови (моющих средств, ржавчины) или никакой реакции не последует ввиду отсутствия перечисленных веществ на инструментах. Реакция проявляется в виде появления фиолетового окрашивания раствора на месте, где обнаружены нежелательные элементы. В таком случае можно говорить, что азопирамовая проба положительная.

Важно знать, что реакция должна последовать именно в течение первой минуты после нанесения раствора на поверхность инструментов. Если она появилась через более длительный срок, на такую реакцию можно не обращать внимания, она не соответствует действительности, а приспособления обработаны хорошо.

Также человеку, занимающемуся предстерилизационной обработкой, нужно знать, что перед проведением проб азопирам надо проверять на пригодность. Ведь в случае окончания срока годности реактив теряет свои свойства и может не реагировать на имеющиеся загрязнения. Даже неразведенный перекисью водорода реактив может храниться только 2 месяца, да и то в холодильнике, в затемнённом флаконе. Если же его хранить при комнатной температуре, то и в тёмном месте он утратит свои качества примерно через месяц. Поэтому проверка реактива очень важна для проведения правильных проб.

Проверять следует уже готовый, разведенный перекисью водорода раствор. Такая проверка подразумевает нанесение реактива на любое пятнышко крови, которое человек может увидеть без увеличительных приборов. Далее проводится наблюдение за реакцией препарата. Если реакция появилась в течение минуты, значит он годен к использованию и им можно проверять весь остальной инструментарий.

Данный реактив является необходимым условием работы с медицинскими приспособлениями. Без его использования нельзя быть уверенным в качестве их обработки.

Инструкция по применению (методические указания) к набору реагентов "Азопирам-СК"

Азопирамовая проба

Целью азопирамовой пробы является выявление следовых количеств крови на изделиях. Для этого готовят рабочий раствор азопирама, смешивая равные объемы (1:1) исходного реактива и 3 % раствора перекиси водорода непосредственно перед проведением пробы. Необходимо помнить, что рабочий раствор пригоден к употреблению только в течение 1 — 2 часов с момента приготовления. Активность рабочего раствора проверяют путем нанесения нескольких капель на препарат с мазком крови.

Азопирамовую пробу медицинская сестра проводит в следующей последовательности:
1) остывшие изделия (температура не выше 25 о С, иначе реактив разрушается) протирают тампоном, смоченным реактивом или наносят несколько капель реактива на поверхность изделия с помощью пипетки;
2) в шприцы наливают три-четыре капли рабочего раствора и несколько раз продвигают поршнем, чтобы он проник в места соединения металла со стеклом;
3) ждут 0,5—1,0 мин реакции рабочего раствора на наличие гемоглобина;
4) раствор из шприца вытесняют на марлевую салфетку, изделия с гладкой поверхностью протирают салфеткой.

Оценивают результаты азопирамовой пробы. При наличии следов крови появляется фиолетовое окрашивание, переходящее в розово-сиреневое. Если окраска изменилась после 1 минуты, проба как положительная не засчитываегся.

Независимо от результатов азопирамовой пробы изделие промывают водой или протирают тампоном, смоченным перекисью водорода или спиртом, чтобы удалить токсические вещества. При положительной пробе вся партия изделий подлежит повторной обработке.

Результат азопирамовой пробы записывают в журнал учета.

Приготовление и проведение азопирамовой пробы

На сегодняшний день азопирамовая проба широко используется во всех лечебно-профилактических и медицинских учреждениях, санитарно-эпидемиологических службах и на дезинфекционных станциях. Данное средство применяется для того, чтобы выявить скрытые следы крови, которые обычно остаются на медицинских инструментах по причине их недостаточной или неаккуратной обработки.

Приготовление азопирамовой пробы не является сложной процедурой. Однако за данную процедуру отвечает производственный отдел аптеки, за что и несет ответственность. Тем не менее, раствор азопирама готовится следующим образом.

1. Берётся исходный раствор азопирама . содержащий 10% амидопирина, 0,15% солянокислого анилина и 95% этилового спирта. В равных соотношениях (1:1) смешиваются исходный раствора азопирама и 3% перекиси водорода.
2. Проверяется активность полученного раствора. С этой целью две или три капли раствора наносят на кровяное пятно. Если в течение одной минуты раствор приобретает фиолетовый окрас, переходящий впоследствии в сиреневый цвет, значит, реактив пригоден к использованию. Если же в течение установленного времени окрас не меняется, значит, реактив не является пригодным для использования.

Проведение азопирамовой пробы необходимо для обработки исследуемых изделий. Полученным раствором (реактивом) смачивают тампоны и протирают ими различные поверхности как аппаратуры, так и оборудования. Такие медицинские инструменты, как иглы, катетеры и шприцы проверяют следующим образом. В шприц набирают несколько капель рабочего раствора и начинают продвигать поршнем, чтобы внутренняя поверхность шприца смочилась этим раствором. Реактив остается в шприце не более одной минуты, после чего выводится на вату либо на белый кусок бумаги. В случае, если раствор принимает фиолетовый окрас, значит, в шприце имелись следы крови. Если же раствор окрашивается в буроватый цвет, имеет место ржавчина.

При проведении азопирамовой пробы следует учитывать некоторые особенности:

• если окрашивание раствора наступило позже, чем через одну минуту после обработки конкретного инструмента, оно не учитывается;
• инструменты, предметы и некоторые элементы оборудования, подлежащие обследованию и обработке, должны иметь комнатную температуру и не должны быть горячими;
• категорически запрещается хранить рабочий раствор на ярком свету либо при высокой температуре;
• рабочий раствор азопирама необходимо использовать в течение 1-2 часов.

Как только проверка была осуществлена, исследуемые инструменты очищаются от остатков реактива с помощью ватного тампона, смоченного водой или спиртом.

Фенолфталеиновая проба осуществляется с целью определения и выявления следов моющих средств при предстерилизационной обработке инструментов медицинского назначения.

Исследуемый инструмент необходимо протереть марлевой салфеткой или ватным тампоном, смоченными реактивом. Либо с помощью двух-трёх капель 1%-го фенолфталеина наносят на изделие. Результат оценивается в пределах двух минут. Если проба отрицательная, цвет реактива не изменяется. И наоборот, при положительной пробе цвет реактива изменяется от розового до малинового.

Итак, азопирамовая и фенолфталеиновая пробы проводятся с целью определения качества предстерилизационной обработки инструментов.

Персональный сайт - Контроль качества предстерилизационной очистки

Контроль качества предстерилизационной очистки

Качество предстерилизационной очистки оценивается по отсутствию положительных проб:

1. На кровь - азопирамовая проба.

2. На моющие средства - фенолфталеиновая проба.

3. На масляные препараты - проба с суданом. Эта проба ставится с изделиями, испачканными масляными препаратами.

Медицинская сестра самоконтроль осуществляет после каждой обработанной партии, старшая медсестра - один раз в неделю, специалисты санитарной службы - один раз в месяц в отделениях хирургического профиля и один раз в квартал - в отделениях терапевтического профиля.

Условия проведения контроля:

1. Контролю подлежит 1 % от обработанной партии, но не менее 3-5 шт.

2. Реакция читается в течение одной минуты.

3. Инструмент должен быть холодным и сухим.

4. Рабочий раствор готовится перед применением.

При несоблюдении этих условий может быть ложно-положительная реакция.

Маточным раствором является азопирам, который в холодильнике хранится 2 месяца и вне холодильника 1 месяц с момента изготовления азопирама.

Рабочий раствор азопирама готовится из равных объемов азопирама и 3% раствора перекиси водорода перед применением. Срок годности рабочего раствора азопирама 40 минут, лучше рабочий раствор азопирама готовить перед применением.

Рабочий раствор азопирама проверяется на пригодность не реже одного раза в неделю: на предметное стекло с мазком крови капается 2-3 капли рабочего раствора азопирама, если в течение одной минуты появилось сине­ фиолетовое окрашивание, раствор годен к применению.

Техника проведения пробы.

Лоток выстилается белой салфеткой, на которую помещаются инструменты разной конструкции и конфигурации. Раствор капается на рабочие поверхности, трудно отмываемые части инструмента.

В инструменты, имеющие полости или каналы раствор набирается, а на плоские - капается из пипетки 2-3 капли раствора и сразу засекается время.

Если в течение одной минуты появилось сине-фиолетовое окрашивание ­ реакция на кровь положительная.

Азопирамовая проба является универсальной: при появлении бурого окрашивания - реакция положительная на присутствие хлора и ржавчины, розового - на моющие средства.

Журнал учета качества предстернлизационной обработки

Начат «____ »__________ 2011г. Окончен « __ » _____________2011 г.

Результаты выборочного химического контроля

В случае положительной пробы на кровь, моющие средства, всю группу контролируемых изделий подвергают повторной обработке.

Рабочий раствор - 1 % спиртовый раствор фенолфталеина. В холодильнике

хранится один месяц, вне холодильника - 15 дней.

Техника постановки пробы как и азопирамовая.

Если появилось в течение одной минуты розовое окрашивание, реакция на моющие средства положительная.

Проба с суданом-З.

Проба ставится только на инструменты, испачканные масляными препаратами.

Рабочий раствор - судан-3. В холодильнике хранится 6 месяцев, вне холодильника

Техника постановки пробы.

Инструмент протирается салфеткой, смоченной суданом-З, Далее инструмент ополаскивается проточной водой, обильной струей. Если на инструменте появились желтые пятна или подтеки, реакция на масляные препараты положительная. При отрицательных пробах растворы не меняют свою окраску.

При положительных пробах вся партия инструментов проходит повторную

Инструменты, использованные для контроля, при положительных и отрицательных пробах подвергаются повторной обработке